Caracterización de aislamientos clínicos de Leptospira por métodos fenotípicos y moleculares en la República de Nicaragua
Resumen
En este trabajo se caracterizaron ocho cepas de Leptospira, aisladas de casos clínicos en Nicaragua mediante métodos fenotípicos y moleculares, las cuales no mostraron crecimiento a 13 °C ni en medio suplementado con 8-azaguanina (2,25 mg/mL). Se observó la conversión a formas esféricas a los 60 min de estar expuestas en un medio suplementado con NaCl 1M. Para la caracterización molecular de los aislamientos se realizó la reacción en cadena de la polimerasa (RCP) de genes conservados con cepas patógenas, cuyos productos génicos confieren virulencia al microorganismo ( ompL1 y lipL32 ). Los resultados de este ensayo demostraron la presencia de bandas de amplificación de los genes ompL1 y lipL32 para los ocho aislamientos, lo que permite afirmar que los microorganismos analizados constituyen cepas de Leptospira patógenas, según los métodos fenotípicos y moleculares recomendados.Citas
OPS. Enfermedades desatendidas. Enfermedades de la pobreza. Washington: OPS; 2009. Disponible en: http://www.paho.org/Spanish/AD/DPC/CD/psit-nd-poster.htm.
Adler B, de la Peña M. Leptospira and Leptospirosis. Veterinary Microbiology 2009;2:4382-92.
Levett P, Morey R, Galloway R, Steigerwalt A. Leptospira broomii sp. nov, isolated from humans with leptospirosis. International Journal System Evolution Microbiology 2006;56:671-3.
Rosario LA, Batista N, Arencibia DF, Valdés BY, Jirón W, Duttman CH. Efficacy of Leptospiral vaccine (vax-SPIRAL® ) against challenge with strains isolated from leptospirosis epidemic in Nicaragua using the hamster as biomodel. Veterinary World 2012;5(1):5-12.
NTO-Nicaragua. Norma Técnica Obligatoria Nicaragüense de Prevención y Control de la Leptospirosis Humana. NTON 24 001-05. La Gaceta 2006;27(2):1-53.
Batista N, Arencibia DF, Rosario LA, Jirón W, Duttman CH. Perfil antigénico celular de cepas aisladas de Leptospira en León y Chinandega, Nicaragua. ARS Pharmaceutical 2011;52(4):12-7.
Adler B, De La Peña M. Pathogenesis of Bacterial Infections in Animals. In: Gyles CL, Prescott JF, Songer G, Thoen CO Leptospira , 4 th ed. Hoboken, New Jersey, USA: Wiley-Blackwell; 2010. p.527-47.
Tepstra W, Hartskeerl R, Smits H, Korver H. International Course in Laboratory Techniques for the Diagnosis of Leptospirosis. Amsterdam: Royal Tropical Institute; 2006.
Gravekamp C, Van de Kemp H, Franzen M, Carrington D, Schoone GJ, Van Eys GJ, et al. Detection of seven species of pathogenic leptospires by PCR using two sets of primers. Journal General Microbiology 1993;139:1691-700.
Vaganova A, Freilikhman O, Stoyanova N, Tokarevich N. Interspecific Polymorphism of Gene lipL32 Restriction Profiles of Pathogenic Leptospires. Bull Experimental Biology Medical 2010;149(5):609-11.
Gallegos A, Sandí V. Leptospirosis. Rev Medicina Costa Rica Centroamericana 2010;592:115-21.
Xue F, Yan J, Picardeau M. Evolution and pathogenesis of Leptospira spp : lessons learned from the genomes. Microbiology Infection 2009;11:328-33.
Picardeau M, Bulach D, Bouchier C, Zuerner R, Zidane N, Wilson P, et al. Genome sequence of the saprophyte Leptospira biflexa provides insights into the evolution of Leptospira and the pathogenesis of leptospirosis. PLoS ONE 2008;3:1599-1607.
Ristow P, Bourhy P, Kerneis S. Biofilm formation by saprophytic and pathogenic leptospires. Microbiology 2008; 154:1309-17.
Slack A, Khairani-Bejo S, Symonds M, Dohnt M, Galloway R, Steigerwalt A. Leptospira kmetyi spp . nov, isolated from an environmental source in Malaysia. International Journal System Evolution Microbiology 2009;59:705-8.
Louvel H, Picardeau M. Genetic manipulation of Leptospira biflexa. Current Protocol Microbiology 2007;12(1):25-32.
Hernández P, Díaz C, Dalmau E, Quintero G. A comparison between polymerase chain reaction (PCR) and traditional techniques for the diagnosis of leptospirosis in bovines. Journal Microbiology Methods 2011;84(1):1-7.
Feng C, Li Q, Zhang X, Dong K, Hu B, Guo X. Immune strategies using single-component LipL32 and multi-component recombinant LipL32-41-OmpL1 vaccines against leptospira Braz. Journal Medical Biology Research 2009;42(9):796-803.
Dong H, Hu Y, Xue F, Sun D, Ojcius D, Mao Y, et al. Characterization of the ompL1 gene of pathogenic Leptospira species in China and cross-immunogenicity of the OmpL1 protein. BMC Microbiology 2008;8:223-7.
Moreno N, Agudelo P. Aplicación de las pruebas de PCR convencional simple y múltiple para la identificación de asilamientos de Leptospira spp. en Colombia. Revista Peruana Medicina Experimental Salud Pública 2010;27:548-56.
Vital J, Balassiano I, Oliveira F, Costa A, Hillen L, Pereira M. Multiplex PCR-based detection of Leptospira in environmental water samples obtained from a slum settlement. Memoria Instituto Oswaldo Cruz 2010;105(3):353-5.
Derechos de autor 2015 Luis Alfredo Rosario, Daniel Francisco Arencibia-Arrebola, Niurka Batista, William Jirón, Yolanda Emilia Suárez, Juan Francisco Infante-Bourzac
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