Caracterización de aislamientos clínicos de Leptospira para su uso en vacunas veterinarias
Resumen
Uno de los criterios más importantes para el desarrollo de inmunógenos de Leptospira es contar con cepas bien caracterizadas por su virulencia y representativa de los serogrupos circulantes desde el punto de vista clínico y veterinario. Todo lo cual permite garantizar inmunógenos capaces de proteger contra los serovares presente en la formulación y que afectan a los animales en riesgo. Este trabajo se realizó a partir de aislamientos del agente causal de cinco casos clínicos autóctonos de Leptospira en la provincia de Holguín, Cuba, mediante métodos convencionales: crecimiento a 13ºC, medio suplementado con 8-azaguanina y en presencia de cloruro de sodio. Además, los aislamientos se clasificaron hasta nivel de serogrupo mediante la técnica de microaglutinación. A partir de estos aislamientos fue seleccionada y caracterizada una cepa del serogrupo Ballum como candidato vacunal. Los aislamientos no mostraron crecimiento a 13ºC, ni cuando se le añadió al medio 8-azaguanina (2,25 mg/mL), mientras que todas las cepas mostraron conversión a forma esférica en presencia de cloruro de sodio (1M). La clasificación de los aislamientos permitió disponer de dos cepas pertenecientes al serogrupo Ballum y dos a Pomona. La cepa seleccionada mostró alta virulencia y patogenicidad en el biomodelo Hámster Sirio, además de buena estabilidad en los medios de cultivos. Su clasificación hasta el nivel de serovar mediante el uso de anticuerpos monoclonales determinó su pertenencia al serovar Ballum. El presente trabajo, por primera vez, sienta las bases para formulaciones vacunales novedosas en animales, conteniendo el serogrupo Ballum.Citas
Haake DA, Levett PN. Leptospirosis in humans. Current Topics in Microbiology and Immunology. 2015;387: 65-97.
Teresa PP. Leptospirosis animal en Cuba. En: Congreso Internacional de Leptospirosis, Sifilis y Borreliosis: Espiroquetas. Palacio de las Convenciones, La Habana, 5-7 de mayo, 2010. La Habana. IPK; 2010:10-1.
González M, Martínez R, Cruz R, Infante J, González I, Baró M et al. vax-SPIRAL®. Vacuna antileptospirósica trivalente para uso humano, investigación, desarrollo e impacto sobre la enfermedad en Cuba. Biotec Aplic 2004;2(2):107-11.
Korthof G. Experimentalles schlammfieber beim menschen. Zentr Bakteriol Parasitenk Abt I Orig A 1932;125:429-32.
Fletcher W. Recent work on leptospirosis, tsutsugamushi disease and tropical typhus in the Federated Malay States. Trans Roy Soc Trop Med Hyg 1928;21:265-82.
Faine S. Guidelines for the control of leptospirosis. Geneva: WHO;1982.
Cole J, Sulzer C, Pursell A. Improved microtechnique for the leptospiral microscopic agglutination test. Appl Microbiol 1973;5:65-9.
Rodríguez I, Obregón A, Rodríguez J, Fernández C, Arzola A, Victoria B. Caracterización serológica de cepas aisladas de pacientes con leptospirosis humana en Cuba. Rev Cub Hig Epidemiol 2002;40(1):11-5.
González A, Batista N, Valdés Y, González M. Crecimiento, virulencia y antigenicidad de Leptospira interrogans serovar mozdok en medio EMJH modificado. Rev Cub Med Trop 2002;54(1):32-6.
Reed LJ, Muench H. A simple method of estimating fifty percent endpoints. Am J Hyg. 1938;27(3):493-7.
Gallegos A, Sandí V. Leptospirosis. Rev Med Costa Rica Centroam 2010;592:115-21.
Picardeau M, Bulach D, Bouchier C, Zuerner R, Zidane N, Wilson P, et al. Genome sequence of the saprophyte Leptospira biflexa provides insights into the evolution of Leptospira and the pathogenesis of leptospirosis. PLoS ONE 2008;3:1599-1607.
González A. Evaluación de la potencialidad vacunal de dos cepas de Leptospira interrogans serogrupo Ballum. [Tesis de Maestría]. La Habana: Facultad de Biología, Universidad de La Habana; 2003.
Obregón AM, Fernández C, Rodríguez I, Rodríguez J, Zamora Y. Avances de laboratorio en el diagnóstico serológico y la investigación de la leptospirosis humana en Cuba. Rev Cub Med Trop 2007;59(1):1-7.
Fajardo E, Ortiz B, Chávez A, Gainza N, Izquierdo L, Hernández Y, et al. Estandarización de la dosis 50 de las cepas de Leptospira interrogans utilizadas en el control de la vacuna cubana contra la leptospirosis humana. Rev Cub Med Trop 1998;50(1):22-6
Colleen L, Lau C, Smythe L, Weinstein P. Leptospirosis: An emerging disease in travellers, Travel Medicine and Infectious Diseases 2010;8(1):33-9.
Choy HA, Kelley MM, Chen TL, Moller AK, Matsunaga J, Haake DA. Physiological osmotic induction of Leptospira interrogans adhesion: LigA and LigB bind extracellular matrix proteins and fibrinogen. Infect Immun 2007;75(5):2441-50.
Croda J, Figueira C, Wunder E, Santos C, Reis M, Ko AI, et al. Targeted mutagenesis in pathogenic Leptospira: disruption of the LigB gene does not affect virulence in animal models of leptospirosis. Infect Immun 2008;76(12):5826-33.
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