Artículo
Original
Gestión de riesgos aplicado al diseño de un nuevo
proceso productivo de un inmunoterapéutico del Centro de Ingeniería Genética y
Biotecnología
Risk management
applied to the design of a new production process for an immunotherapeutic from
the Center for Genetic Engineering and Biotechnology
Isabel
Apezteguía-Rodríguez1* ORCID:
https://orcid.org/0000-0001-9939-6911
José García-Suárez2,3 ORCID: https://orcid.org/0000-0003-2242-8318
Lourdes Margarita
Zumalacárregui-de Cárdenas3 ORCID:
https://orcid.org/0000-0001-6921-737X
Elías Nelson
Rodríguez-García1 ORCID:
https://orcid.org/0000-0002-9756-5280
Mónica María
Navarro-Mena1 ORCID: https://orcid.org/0000-0002-1621-3196
Natacha
Pérez-Rodríguez1 ORCID:
https://orcid.org/0000-0001-7413-5651
Odalys Ruiz Hernández1 ORCID:
https://orcid.org/0000-0002-1181-8313
1
Centro de Ingeniería Genética y Biotecnología. La Habana, Cuba.
2 Centro de
Histoterapia Placentaria, La Habana, Cuba.
3 Universidad Tecnológica de La
Habana “José Antonio Echeverría”, La Habana, Cuba.
Autor para correspondencia: isabel.apezteguia@cigb.edu.cu
Recibido: 16 de marzo de 2022
Aceptado: 17 de junio de 2022
RESUMEN
El estudio expone
las acciones dirigidas a la reducción de los riesgos en el diseño de un nuevo
proceso de producción del ingrediente farmacéutico activo de un
inmunoterapéutico producido en el Centro de Ingeniería Genética y
Biotecnología. El análisis modal de fallas y efectos fue conducido por un
equipo multidisciplinario del referido centro. La administración de riesgos a
la calidad se aplicó a la tecnología de obtención de una proteína recombinante
con uso diagnóstico que se proponía transferir a la Dirección de Desarrollo
Tecnológico. El riesgo en el diseño de un nuevo proceso de producción evaluó
las fallas de mayor influencia en el bajo recobrado y el incumplimiento de las
especificaciones de calidad del inmunoterapéutico. Las causas potenciales de
estos fallas fueron: la insuficiente
cantidad de viales de los bancos de células, el medio de cultivo complejo con
componentes de origen bovino, la incorrecta
manipulación de las muestras por los operarios, el uso de equipamiento no
adecuado, los parámetros de operación (agitación, pH y conductividad) fuera de
límites de especificación con efecto sobre la pureza por el alto porcentaje de
contaminantes del hospedero; así como, un medio filtrante inadecuado unido a
una incorrecta preparación del sistema de filtración redundantes en un producto
no estéril. Las acciones
llevaron a
modificaciones en la tecnología propuesta por la
Dirección de Investigaciones Biomédicas que permitió el diseño
de un nuevo proceso productivo para
un biofarmacéutico destinado al tratamiento de enfermedades virales crónicas.
Palabras clave: ciclo de vida; gestión de riesgos; inmunoterapia.
ABSTRACT
The study aimed at reducing
risks in the design of a new production process for the active pharmaceutical
ingredient of an immunotherapeutic produced at the Center for Genetic
Engineering and Biotechnology. The failure mode and effects analysis were
conducted by a multidisciplinary team from the center. Quality risk management
was applied to the technology for obtaining a recombinant protein for
diagnostic use that was proposed to be transferred to Technological Development
Division. The risk analyses evaluated the greatest influence on low recovery
and non-compliance with the immunotherapeutic quality specifications. The
potential causes of the failures were: the insufficient number of vials in cell
banks, the complex culture medium with components of bovine origin, the samples
handling errors by the operators, the use of inappropriate equipment, the
parameters of operation (agitation, pH and conductivity) outside specification
limits affecting purity due to the high percentage of contaminants from the
host; as well as, the inadequate filtering medium together with an incorrect
preparation of the redundant filtration system in a non-sterile product. The
actions could modify the technology proposed by Biomedical Research Division
that allowed the design of a new production process of a biopharmaceutical
product for the treatment of chronic viral diseases.
Keywords: life cycle; risk
management; immunotherapy.
Introducción
El ciclo de vida de un
producto transita por el desarrollo farmacéutico, la transferencia tecnológica,
la producción y la discontinuidad.(1) Es un concepto emitido por la
guía Q8 del Consejo Internacional para Armonización de los Requisitos Técnicos
de los Productos Farmacéuticos de Uso en Humanos, conocida por las siglas en
inglés ICH.(2) Esta consideración es válida para la industria
biotecnológica cubana que debe acceder a los mercados internacionales con
productos de alto valor agregado, que contribuyan a la economía del país y
permitan elevar los niveles de salud de la población cubana.
El Centro de Ingeniería
Genética y Biotecnología (CIGB) posee un sistema de gestión de la calidad
dirigido al control de los proyectos desde la investigación, el desarrollo, la
producción y comercialización de ingredientes farmacéuticos activos (IFA) biotecnológicos
para uso humano y veterinario, para hacer más viable y efectivo el cumplimiento
de las Buenas Prácticas de Fabricación (BPF).
En el CIGB existía un
proceso de obtención de una proteína recombinante que se usaba en el sistema
diagnóstico de una enfermedad viral crónica, pero el recobrado era bajo y no lograba las especificaciones de calidad
requeridas por las regulaciones vigentes para un inmunoterapéutico para uso humano.(3,4)
Se decidió
trabajar en un proyecto de investigación dedicado
a lograr un inmunoterapéutico humano, por lo que fue necesario diseñar un nuevo
proceso tecnológico para obtener la molécula de interés con las
especificaciones de calidad de inmunoterapéutico para administrar a seres
humanos.
La transición de la
etapa de investigaciones a desarrollo farmacéutico del producto deberá basarse en la administración de riesgo a la
calidad tomando en cuenta las experiencias y conocimientos previos, la
complejidad del proceso y las especificaciones del producto. La identificación,
análisis, evaluación y revisión de los riesgos son necesarios para la toma de
decisiones que controlan los gastos, acortan los plazos y logro de objetivos.(5)
La
transferencia de la tecnología de la obtención de la proteína para sistemas
diagnóstico de la etapa de investigación hacia la fase de desarrollo
tecnológico se realizó cumpliendo con el procedimiento interno y las
recomendaciones de las regulaciones.(6) En este trabajo se muestra la
aplicación de la gestión de riesgos al
diseño de un nuevo
proceso de producción del IFA de un inmunoterapéutico producido en el CIGB.
Materiales y Métodos
El trabajo en equipo,(7)
el diagrama de flujo,(8) el método de las 6M o análisis de
dispersión,(9,10) el diagrama causa-efecto(10) y la
metodología del análisis modal de fallas y efectos (AMFE)(10) fueron
las técnicas y métodos de calidad empleados en esta investigación.
La administración de
riesgos a la calidad para la
identificación de los factores que pudieran influir en el diseño del nuevo proceso de producción del
IFA de la
proteína recombinante como inmunoterapéutico humano fue dirigida por un
equipo de nueve integrantes que trabajan en las áreas de Investigaciones,
Desarrollo Tecnológico, Gestión de la Calidad y Asuntos Regulatorios (GCAR) y
Control de la Calidad del CIGB, según las recomendaciones de varios autores en
la literatura consultada.(11,12)
Los especialistas se
seleccionaron por sus responsabilidades en el proyecto de la proteína
recombinante para uso diagnóstico, su conocimiento teórico y práctico, tanto en
el propio proceso como en BPF, la posibilidad de participación creativa, la
capacidad de resolución de problemas, el comportamiento grupal y la orientación
y respuesta lógica a las interrogantes que se formularon para definir las
acciones que se tomaron.(13)
Primeramente, se realizó
la representación esquemática de la secuencia de las operaciones del proceso de
obtención de la proteína con fines diagnóstico utilizando el diagrama de flujo(8)
(Fig. 1) que sirvió para resumir las características de la tecnología propuesta
a transferir de la etapa de investigaciones a la de desarrollo tecnológico.
Para aplicar el trabajo
en equipo(7) se efectuaron seminarios interactivos en que los
investigadores transmitieron a los especialistas de Desarrollo Tecnológico y
demás miembros del grupo: la descripción del proceso de obtención de la
proteína para uso diagnóstico, la caracterización físico-química de la proteína
y los resultados obtenidos en los estudios de inmunogenicidad en animales que
demostraban la inducción dela respuesta inmune celular y humoral.
Con el método de las 6M o
análisis de dispersión(9,10) se identificaron los riesgos del
proceso a transferir de la etapa de investigaciones, mientras que el diagrama
causa-efecto(10) sirvió para la identificación de las posibles
causas que pudieran influir en el bajo recobrado del proceso y el
incumplimiento con las especificaciones de calidad de un producto
biofarmacéutico para administrar en seres humanos (Fig. 2).
La metodología del AMFE(10,13,14)
se aplicó al proceso de obtención de la proteína recombinante de uso
diagnóstico para analizar las fallas potenciales enfocadas en posibles fuentes
de riesgos y definidas por tres parámetros: ocurrencia (O), severidad (S) y
detección (D). El número de prioridad de riesgo (NPR) se calculó como el
producto de los tres factores (NPR=S*O*D).(15,16) Los
criterios para la clasificación se discutieron con el grupo de expertos y se
resumieron en la Tabla 1.
Tabla
1.
Criterios para la clasificación de la severidad, ocurrencia y detección.
Valor |
Severidad (S) |
Ocurrencia
(O) |
Detección (D) |
3 |
Afecta la calidad del ambiente,
producto o consistencia del proceso. |
Ha ocurrido más de una vez en el
período. |
Probabilidad remota o imposible de
detectar. |
2 |
Afectación indirecta sobre la calidad
del ambiente, producto o consistencia del proceso. |
Ha ocurrido al menos una vez en el
período. |
Probabilidad baja de detección. |
1 |
No afecta la calidad del ambiente,
producto o consistencia del proceso. No incumple las exigencias regulatorias. |
No ha ocurrido antes, pero puede
ocurrir. |
Probabilidad muy grande de detección. |
Los valores de NPR pueden variar desde 1 (valor
mínimo) hasta 27 (valor máximo). Se definieron tres intervalos de NPR para
encauzar las decisiones sobre el tipo de acción a tomar, clasificados en: bajo
cuando NPR≤3; medio: de 4 a 9 y alto si NPR>9.
Fig. 2. Diagrama causa-efecto del proceso de la proteína
recombinante para fines diagnóstico.
Cuando los valores del NPR están en el intervalo: 1
≤ NPR ≤ 3, no hay impacto del riesgo sobre el proceso y no requiere validación.
Si el NPR se encuentra: 4 ≤ NPR ≤ 9 no tiene un impacto significativo sobre la
calidad el proceso/producto, pero debe ser documentado. Si NPR > 9 tiene un
impacto directo en la calidad del proceso/producto.(13)
Resultados y Discusión
Identificación,
evaluación, control y revisión de los riesgos aplicado al proceso de obtención
de la proteína recombinante de uso diagnóstico
En la Tabla 2 se presenta el resultado de la
identificación de los principales modos de falla, efectos de las fallas, causas
potenciales y NPR acorde al estudio realizado a partir del conocimiento del
flujo tecnológico (Fig. 1) y del diagrama causa-efecto (Fig. 2).
La toma de acciones tiene
que ser priorizada para las fallas con una ponderación del NPR alto. En primer
lugar, se identificaron como riesgos la insuficiente
cantidad de viales de los bancos de células y el medio de cultivo complejo que
contenía materias primas de origen bovino en su composición. Con este análisis se
identificó la incorrecta manipulación de las muestras
por los operarios con probable repercusión en el rendimiento esperado del
proceso. En los pasos de ruptura y precipitación salina, el uso de un
equipamiento no adecuado (no tenía un sistema de enfriamiento incorporado para
garantizar la temperatura de la crema), una insuficiente agitación y los
parámetros pH y conductividad fuera de límites de especificación pudieron haber
provocado afectaciones en el recobrado y en la pureza debido a un alto
porcentaje de contaminantes del hospedero como: ADN, proteínas y endotoxinas.
Otras fallas detectadas fueron el
empleo de un medio filtrante inadecuado y una incorrecta preparación del
sistema de filtración. Las BPF para productos estériles vigentes recomiendan
utilizar un filtro estéril de 0,22 micras (o menos) de poro nominal, o con
propiedades al menos equivalentes de retención de microorganismos para pasar el
producto a un recipiente previamente esterilizado. Además, enuncian que se debe
prestar una atención especial para asegurar la esterilidad del producto al
ensamblaje del filtro. Todo lo anterior con el propósito de cumplir con uno de
los requisitos de calidad de este IFA destinado a la formulación de un fármaco
de administración en seres humanos.(17)
La gestión de riesgo se realizó por anticipado para
diseñar el nuevo proceso de producción del biofarmacéutico para uso terapéutico
en pacientes; se identificaron las posibles causas de las fallas potenciales
con mayor influencia en la tecnología existente:
1. Cantidad
insuficiente de viales de los Bancos de Células Primario (BCP) y de Trabajo
(BCT) para un proceso consistente. Los bancos de células
confeccionados en el área de Investigaciones no se habían realizado por
duplicado, las condiciones de almacenamiento no eran adecuadas para garantizar
la viabilidad de las células y, al mismo tiempo, protegerlas de la
contaminación. Por otra parte, el control periódico de los bancos no se había
realizado para determinar su disponibilidad para el uso.(3,4)
Tabla 2. Resultados
del Análisis Modal de Fallos y Efectos del nuevo proceso del inmunoterapéutico.
6M |
Escenario
de riesgo |
O |
S |
D |
NPR |
Acciones |
O |
S |
D |
NPR |
Mano de obra |
Incorrecta preparación de los bancos
de células |
3 |
2 |
1 |
6 |
Capacitación del personal y supervisión del
cumplimiento de los procedimientos |
3 |
1 |
1 |
3 |
Inadecuada preparación de medios de
cultivo y soluciones |
3 |
3 |
1 |
9 |
3 |
2 |
1 |
6 |
||
Incorrecta inducción del cultivo |
3 |
2 |
1 |
6 |
3 |
1 |
1 |
3 |
||
Incorrecta manipulación de las
muestras |
3 |
2 |
3 |
18 |
3 |
2 |
1 |
6 |
||
Incorrecta manipulación de las
operaciones |
3 |
2 |
1 |
6 |
3 |
2 |
1 |
6 |
||
Incorrecta preparación del sistema de
filtración |
3 |
2 |
3 |
18 |
3 |
2 |
1 |
6 |
||
Insuficiente capacitación del
personal |
3 |
3 |
1 |
9 |
3 |
1 |
1 |
3 |
||
Maquinaria |
Insuficiente agitación |
3 |
2 |
2 |
12 |
Comprobar el parámetro: agitación. |
3 |
3 |
1 |
9 |
Equipamiento no adecuado (sin sistema
de enfriamiento) |
3 |
3 |
2 |
18 |
Disponer de un sistema de enfriamiento apropiado
para garantizar la temperatura de la crema. |
3 |
1 |
1 |
3 |
|
Medio filtrante inadecuado |
3 |
3 |
3 |
27 |
Disponer del medio filtrante idóneo |
3 |
1 |
1 |
3 |
|
Metodología |
Irregularidades en la higienización del
área de trabajo |
3 |
2 |
1 |
6 |
Capacitación del personal y supervisión del
cumplimiento de los procedimientos |
3 |
1 |
1 |
3 |
Inadecuada esterilización de los
materiales |
3 |
2 |
1 |
6 |
3 |
1 |
1 |
3 |
||
Inadecuado manejo de las BPF durante
la aprobación de los bancos de células |
3 |
3 |
1 |
9 |
3 |
1 |
1 |
3 |
||
Pasos no cromatográficos y cromatográficos incapaces de remover los
contaminantes del hospedero |
3 |
3 |
3 |
27 |
Diseño e implementación de un nuevo proceso para disminuir el alto
porcentaje de contaminantes |
3 |
1 |
1 |
3 |
|
Materiales |
Insuficiente cantidad de viales de
los bancos de células |
3 |
3 |
3 |
27 |
Elaborar los Banco de Células Primarias y Banco de Células de Trabajo con un número suficiente de viales. |
3 |
3 |
1 |
9 |
Disminución de la estabilidad
plasmídica |
3 |
1 |
2 |
6 |
Comprobación periódica de los Banco de Células Primarias y Banco de Células de Trabajo. |
3 |
1 |
1 |
3 |
|
Vector de expresión deteriorado |
3 |
1 |
2 |
6 |
3 |
1 |
1 |
3 |
||
Materias primas, matrices o
soluciones vencidas |
3 |
1 |
3 |
9 |
Verificar la fecha de vencimiento de
las materias primas y materiales. |
3 |
2 |
1 |
6 |
|
Medio de cultivo complejo con materias
primas de origen bovino |
3 |
3 |
3 |
27 |
Utilizar medios de cultivo
químicamente definidos. Verificar si los proveedores de materias primas
emiten certificados libres de encefalopatía
espongiforme bovina/encefalopatías transmisibles. |
3 |
2 |
1 |
6 |
|
Alto porcentaje de contaminantes del
hospedero |
3 |
2 |
3 |
18 |
Capacitación y supervisión del personal en el
manejo de las muestras |
3 |
2 |
1 |
6 |
|
Medio ambiente |
Temperatura de trabajo del área no
adecuada |
3 |
3 |
1 |
9 |
Supervisión permanente automatizada de la
temperatura del local Supervisión de la limpieza de área y cabinas de
flujo laminar |
3 |
1 |
1 |
3 |
Inadecuada limpieza de área y cabinas
de flujo laminar |
3 |
2 |
1 |
6 |
3 |
1 |
1 |
3 |
||
No existen condiciones adecuadas de
cultivo durante el inóculo |
3 |
2 |
1 |
6 |
Revisar periódicamente el programa de
mantenimiento preventivo del equipamiento Revisar periódicamente el programa de monitoreo
ambiental del área |
3 |
1 |
1 |
3 |
|
Microbiología del área fuera de
especificación |
3 |
3 |
1 |
9 |
3 |
1 |
1 |
3 |
||
Medición |
Técnicas analíticas no validadas |
3 |
2 |
1 |
6 |
Validar las técnicas analíticas |
3 |
1 |
1 |
3 |
Parámetros de operación fuera de
límites de especificación (pH y conductividad) |
3 |
3 |
2 |
12 |
Establecer un punto de inspección para pH y
conductividad |
3 |
2 |
1 |
6 |
|
Uso de instrumentos de medición no
calibrados |
3 |
3 |
2 |
12 |
Revisar periódicamente el estado de la
calibración de los instrumentos |
3 |
1 |
1 |
3 |
S: severidad. O: ocurrencia. D: detección. BCP: Banco de
células primario. BCT: Banco de células de trabajo. MP: materia prima. EEB:
encefalopatía espongiforme bovina. ET: encefalopatías transmisibles. CLAR:
Cromatografía líquida de alta resolución
2. El medio de cultivo utilizado en la preparación de los bancos de
células, multiplicación y fermentación de la cepa hospedera fue Luria Bertani
(LB).(18,19) Este
tipo de medio complejo es caro, los microorganismos presentan un crecimiento
bajo en él y contiene materiales biológicos de origen bovino de proveedores que
sus certificados no especifican si los productos están libres de encefalitis
espongiforme bovina (EEB) o encefalopatías transmisibles (ET).(20)
3. La etapa de cosecha, lavado de la biomasa y
ruptura tenía bajo recobrado. El equipamiento no era adecuado (sin sistema de
enfriamiento incorporado) para obtener el rendimiento de proteína esperada. Además, las condiciones establecidas a nivel de laboratorio (ruptura
celular con ultrasonido) no podían ser reproducidas para su futura
transferencia tecnológica al sistema productivo. Estas
operaciones con estos equipos no aseguraban que el producto intermedio se
recuperase con consistente calidad.(3)
4. La
etapa de purificación no rendía los niveles de pureza y recobrado esperados
para el IFA de un inmunoterapéutico humano. Los recobrados eran bajos en los pasos
cromatográficos y no cromatográficos, pues el proceso no removía
suficientemente los contaminantes del hospedero, tales como ADN, proteínas y
endotoxinas, lo que no cumplía con los requisitos de las BPF de productos
biológicos vigentes para la producción de proteínas recombinantes que
recomiendan procesos de purificación capaces de eliminar las proteínas no
deseadas de la célula huésped, los ácidos nucleicos, contaminantes del
hospedero, carbohidratos, virus y otras impurezas que estarán dentro de los
límites definidos validados.(4)
5. El
purificado final no cumplía con las especificaciones de calidad de un producto
biofarmacéutico estéril. La filtración del
purificado final utilizaba un medio
filtrante inadecuado (membrana plana de 0,2 µm) y la operación no cumplía con
las condiciones sanitarias ni con los principios de BPF exigidos para un IFA
destinado a un farmacéutico estéril.(17)
Las causas potenciales
aportaron una parte fundamental a la variabilidad y la calidad del proceso, por
lo que los esfuerzos de mejora se enfocaron hacia estos elementos en conjunto
con las acciones enfocadas a la mitigación de los riesgos.
La estrategia a seguir
para establecer el nuevo proceso de producción de IFA del inmunoterapéutico
presentó las siguientes acciones:
1. Elaborar los BCP y BCT con un número suficiente de
viales, según el procedimiento interno, que prevé los ensayos periódicos de
caracterización: viabilidad, pureza, análisis de restricción, estabilidad
plasmídica y expresión de la proteína recombinante como parte de los requisitos
exigidos para declararlos como aptos para su uso.(3,4)
2. Utilizar medios de cultivo de composición
definida en la fermentación, los cuales se preparan a partir de sales
inorgánicas y una única fuente de carbono.
3. Establecer en el
proceso de cosecha, lavado y ruptura de la biomasa el equipamiento adecuado
para incrementar el recobrado de la etapa.
4. Implementar mejoras en
los pasos cromatográficos y no cromatográficos para aumentar la pureza de la
proteína y disminuir los contaminantes procedentes del hospedero: ADN, proteínas
y endotoxinas.
5. Emplear en la
filtración del purificado final un medio filtrante adecuado y hacer el chequeo
de control microbiológico antes y después al material filtrado para conocer si
cumple con las especificaciones de un producto biofarmacéutico estéril.
También se formularon otras acciones para controlar
riesgos que afectaban la obtención de la proteína con la pureza requerida para
un producto inmunoterapéutico estéril como: establecer
el chequeo de las variables, pH y conductividad en los pasos de ruptura
celular, precipitación salina, intercambio iónico y cromatografía líquida de alta resolución -gel filtración (CLAR-GF). Además, implantar el control de los
parámetros críticos (pH y presión) durante la fermentación; disponer de un
sistema de enfriamiento apropiado para garantizar la temperatura de la crema
rota; así como, entrenar y supervisar el personal de operaciones de apoyo y
proceso. Dichas condiciones y controles de proceso durante el crecimiento
celular, la expresión y purificación de proteínas se deben mantener dentro de
los parámetros validados, para asegurar un producto consistente con un rango
definido de impurezas que esté dentro de la capacidad del proceso para
reducirlas a niveles aceptables.(4)
El propósito de establecer el nuevo proceso
del IFA llevó a tomar medidas alineadas con las recomendaciones de las
directrices sobre BPF de productos farmacéuticos vigentes en Cuba como:
- Comprobar la
certificación de liberación y periodo de vigencia de las materias primas,
matrices cromatográficas y soluciones por una persona u organización
autorizada, pues todos los materiales que ingresen a la entidad serán sometidos
a cuarentena inmediatamente después de su recepción, hasta que sean liberados
para su uso; luego deben ser almacenados en condiciones apropiadas establecidas
por el fabricante y en un orden tal que pueda efectuarse la segregación de los
lotes y la rotación de las existencias, según la regla de que los primeros que
expiran son los primeros que salen.(21) En los procesos de
purificación, las matrices cromatográficas dedicadas a un solo producto, se
esterilizarán o higienizarán para los distintos lotes. Se evitará el uso de una
misma matriz en diferentes etapas del proceso de producción. Se definirán los
criterios de aceptación, las condiciones de operación, la vida útil y los
métodos de regeneración, higienización y esterilización de las mismas. También
se prestará particular atención a la vigilancia de las cargas biológicas y
endotoxinas.(4)
- Validar las técnicas analíticas utilizadas en las
actividades de control pues todos
los procedimientos analíticos empleados para análisis deben ser adecuados para
el uso al que están destinados. Esto se demuestra por validación de acuerdo al
protocolo, que incluye las características de desempeño analítico a ser
verificadas para los diferentes tipos de procederes analíticos. Las
características típicas que deben considerarse: exactitud, precisión, robustez,
linealidad e intervalo, especificidad, paralelismo, límite de detección y de cuantificación.(22)
- Elaborar un procedimiento
para la preparación y esterilización de materiales que tengan efecto para
prevenir la contaminación que pueda alterar la calidad de los productos
intermedios o del IFA en la esterilidad del producto.(17)
- Revisar periódicamente el programa de
mantenimiento preventivo del equipamiento. Debido a que los servicios de
mantenimiento y calibración de los equipos e instrumentos de medición, registro
y control se deben realizar a intervalos predefinidos, manteniéndose registros
de dichas operaciones. El personal para asegurar el adecuado funcionamiento de
los equipos debe revisarlos diariamente o antes de su uso. El programa
permanente desde su implementación inicial será revisado como mínimo
anualmente.(22)
- Supervisión automatizada permanente al monitoreo
de la temperatura, humedad relativa y presión absoluta de cada local. Los sistemas de calentamiento, ventilación y
acondicionamiento del aire, estarán diseñados, construidos y mantenidos para
garantizar una temperatura y humedad relativa satisfactoria, minimizar el
riesgo de contaminación cruzada entre las diferentes áreas de producción y
tener en cuenta la comodidad del personal que trabaja con vestimenta
protectora. Es posible que las unidades manejadoras de aire sean específicas
para un área. En caso de la emisión de alertas en función de las
especificaciones de área establecidas y aprobadas para cada local las causas de
los incumplimientos de estos parámetros se investigarán para dictar las
acciones aplicables.(4)
A
partir de las fallas detectadas por la gestión de riesgos a la calidad se
implementaron mejoras con respecto a la tecnología procedente del área de
Investigaciones que se destacan en la Tabla 3. Con estos cambios se diseñó el
nuevo proceso productivo del IFA del inmunoterapéutico (Fig. 3) con el
propósito de garantizar la calidad del producto y la seguridad del paciente.
Tabla
3. Mejoras
en el nuevo proceso de producción del IFA del inmunoterapéutico.
|
Proceso de obtención proteína-diagnóstico (Investigaciones) |
Nuevo proceso de producción IFA-inmunoterapéutico (Desarrollo
Tecnológico) |
Etapas del
proceso |
BCP |
BCP, BCPE y BCT (suficiente cantidad de
viales) |
Inoculación del BCP en medio LB con kanamicina +
triptófano |
Inoculación del BCP en medio
químicamente definido (materias
primas libres de EEB o ET) |
|
Ruptura
celular con ultrasonido |
Ruptura celular con un homogenizador de alta presión |
|
Precipitación salina diferencial (sulfato de
amonio al 10% y 40%) |
Precipitación salina diferencial (sulfato de amonio al
20%) |
|
Resuspensión del precipitado-Concentración por
ultrafiltración |
- |
|
Cromatografía
por gel filtración |
Cromatografía de interacciones hidrofóbicas (remoción del ADN contaminante del hospedero) |
|
Cromatografía de intercambio aniónico con lavado
de tritón X-114 (reducción del
contenido de endotoxinas) |
||
Concentración/diafiltración en sistema de
filtración tangencial |
||
CLAR-GF (pureza ≥ 95%) |
||
Filtración final esterilizante por membrana plana
de 0,2 µm |
Filtración final esterilizante por cápsulas |
|
Recobrado |
47% |
≥ 70% |
Pureza |
90% |
≥ 95% |
BCP: Banco de células primario. BCPE: Banco de células primario extendido; BCT:
Banco de células de trabajo. EEB: encefalopatía espongiforme bovina. ET:
encefalopatías transmisibles. CLAR-GF: Cromatografía líquida de alta
resolución-gel filtración.
Fig. 3. Nuevo proceso de producción del IFA del
inmunoterapéutico humano.
El
nuevo proceso de producción rindió el IFA del inmunoterapéutico con las
características y atributos críticos de calidad para uso humano que se muestran
en la Tabla 4.
Tabla 4. Especificaciones de calidad del IFA
inmunoterapéutico para uso humano.
Característica |
Atributo critico de calidad |
|
Identidad antigénica |
Identificado |
|
Pureza |
SDS-PAGE |
≥ 95% |
CLAR-GF |
≥ 95% |
|
Esterilidad |
Pasa la prueba |
|
Endotoxinas |
≤ 1,15 UE/µg |
|
Concentración de
proteínas |
≥ 0,30 mg/mL |
|
Proteínas contaminantes
de hospedero |
≤ 0,80% |
|
ADN contaminante |
≤ 2 µg ADN/100 µg dosis |
|
pH |
6,3 – 7,3 |
SDS-PAGE: electroforesis en gel de poliacrilamida
en presencia de SDS. CLAR-GF: Cromatografía líquida de alta
resolución-gel filtración.
Los atributos
críticos de calidad establecidos para la producción de los IFA para uso humano
se correspondieron con los requisitos exigidos por las regulaciones nacionales
e internacionales.(2,3,4)
El seguimiento anual al
plan de manejo de los riesgos conducido por la Dirección de GCAR, acorde a las
recomendaciones de la guía Q9,(15) comprobó el estado de cumplimiento
de las acciones con una disminución de un
nivel de riesgo alto a moderado y bajo (Tabla 2). De la revisión, las causas
potenciales de esos riesgos en el nuevo proceso de producción del IFA del
inmunoterapéutico humano son atendidas en la fabricación de lotes.
Conclusiones
La gestión de riesgos llevó a mejoras para
reducir las fallas detectadas en la
tecnología propuesta a transferir que permitió el diseño
del nuevo proceso de producción del IFA con el propósito de obtener un
inmunoterapéutico para enfermedades virales crónicas. La revisión sistemática y
periódica de este análisis de riesgo debe servir como estrategia en el diseño
de nuevas producciones biotecnológicas en el CIGB.
Referencias
1. European
Medicines Agency. ICH guideline Q10 on pharmaceutical quality system. London: EMA; 2015. Disponible
en: https://www.ema.europa.eu/en/ich-q10-pharmaceutical-quality-system (Consultado en línea: 28 de febrero de 2022).
2. European
Medicines Agency. ICH guideline Q8 (R2) on pharmaceutical development. London: EMA; 2017. Disponible
en: https://www.ema.europa.eu/en/ich-q8-r2-pharmaceutical-development (Consultado en línea: 28 de febrero de 2022).
3. Yáñez-Chamizo B, Martínez-Pi Y, González-Cabeza Y,
Figueroa-Pérez R, Pérez-Gutiérrez J, Hechavarría-Milá JA, et al. Buenas
Prácticas para la Fabricación de Ingredientes Farmacéuticos Activos (Anexo No. 9 de la Regulación No. 16-2012) En: Pérez-Cristiá RB y Colectivo de Autores. Buenas
Prácticas Farmacéuticas. Sistema Regulador en Cuba. Segunda edición. La Habana: Centro para el Control Estatal de
Medicamentos, Equipos y Dispositivos Médicos (CECMED); 2017. p.204-28.
4. Centro
para el Control Estatal de Medicamentos, Equipos y Dispositivos Médicos
(CECMED). Buenas prácticas para la fabricación de productos biológicos Segunda
Edición del Anexo No. 10 de la Regulación No. 16-2012. La Habana: CECMED; 2020.
Disponible en:
https://www.cecmed.cu/sites/default/files/adjuntos/Reglamentacion/ResRegBPFpb.pdf
(Consultado en línea: 28 de febrero de 2022).
5. Londoño JA, Velásquez SM,
Villa ME, Franco FJ, Viana NE. Identificación
de tipos, modelos y mecanismos de transferencia tecnológica que apalancan la
innovación. Revista Cintex.
2018; 23 (2):13-23. doi: https://10.33131/24222208.314.
6. World Health
Organization (WHO). WHO guidelines on the transfer of technology in
pharmaceutical manufacturing. Interim
version for submission to the Expert committee on specifications for pharmaceutical preparations. Geneva: WHO; 2021.
Disponible en:
cdn.who.int/norms-and-standards/qas20-869-transfer-of-technology. (Consultado en línea: 28 de febrero de 2022).
7. Cuesta A. La organización del trabajo en la GRH.
En: Tecnología de Gestión de Recursos Humanos. La Habana: Editorial Félix
Varela; 2008.p.1-72.
8. Verdoy PJ, Mateu-Mahiques J, Sagasta-Pellicer S,
Sirvent-Prades R. Manual de control estadístico de calidad: Teoría y aplicaciones.
Castelló de La Plana: Universitat Jaume I; 2006.
9. Apezteguía-Rodríguez I, Díaz-Montel B,
García-Martínez Y, Trimiño-Lorenzo L, Soler-Sánchez D, Font-Echevarría B et al.
Gestión de riesgos relativo al cambio de campaña productiva durante la etapa de
desarrollo tecnológico en una instalación multiproducto. Vaccimonitor. 2020; 29
(3): 118-28. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1025-028X2020000300118. (Consultado en línea: 28 de febrero de 2022).
10. Melo
J C. Gestión de riesgo en la organización. Teoría y práctica. La Habana:
Editorial Academia; 2015.
11. Lock
D, Smith DJ. Cómo gerenciar la calidad total, estrategias y técnicas. Bogotá: Legis Fondo (Ed.); 1991.
12. Sáez F, García O, Palao J, Rojo P. Innovación tecnológica
en las empresas. Madrid: Universidad Politécnica de Madrid (UPM); 2006.
Disponible en: http://dit.upm.es/~fsaez/intl/indicecontenidos.html. (Consultado
en línea: 28 de febrero de 2022).
13. García-Suárez J, Quintana-Esquivel M, Zumalacárregui LM,
Rodríguez-Moltó MP, Suárez-Pérez Y, Cruz-Gutiérrez O. Quality risk assessment
due to the introduction of a new fermentation process in a certified
multiproduct facility. Biotecnol Aplic. 2015;32:4401-5. Disponible en: https://elfosscientiae.cigb.edu.cu/PDFs/Biotecnol%20Apl/2015/32/4/BA003204EN4401-4405.pdf. (Consultado en línea: 28 de febrero de 2022).
14. Maggiulli R, Giancani
A, Fabozzi G, Dovere L, Tacconi L, Amendola G, et al. Assement and management
of risk of SARS-CoV-2 infection in an IVF laboratory. Reprod Biomed
Online.2020; 41(3): 385-94. doi: https://10.1016/j.rbmo.2020.06.017.
15. European Medicines
Agency. ICH guideline Q9 on quality risk management. London: EMA; 2015. Disponible en: https://www.ema.europa.eu/en/ich-q9-quality-risk-management. (Consultado en línea: 28 de febrero de 2022).
16. Institute Health
Improvement [homepage on the Internet]. Risk Priority Number (from Failure
Modes and Effects Analysis). Boston:
Institute Health Improvement; 2022-02. Disponible en: http://www.ihi.org/resources/Pages/Measures/RiskPriorityNumberfromFailureModesandEffectsAnalysis.aspx. (Consultado en línea: 28 de febrero de 2022).
17. Yáñez-Chamizo
B, Martínez-Pi Y, González-Cabeza Y, Figueroa-Pérez R, Pérez-Gutiérrez J,
Hechavarría-Milá JA, et al. Buenas Prácticas para la Fabricación de Productos
Estériles (Anexo No. 4 de la Regulación No. 16-2012). En: Pérez-Cristiá RB y
Colectivo de Autores. Buenas Prácticas Farmacéuticas. Sistema Regulador en Cuba.
Segunda edición. La Habana: Centro para el Control Estatal de Medicamentos,
Equipos y Dispositivos Médicos (CECMED); 2017. p.102-41.
18. Bertani G. Studies on
lysogenesis. I. The mode of phage liberation by lysogenic Escherichia coli. J
Bacteriol. 1951; 62(3):293-300.
19. Luria S, Burrous J.
Hybridization between Escherichia coli
and Shigella. J Bacteriol. 1957; 74(4):461-76.
20. Cayra
E, Dávila JH, Villalta, JM, Rosales Y. Evaluación de la estabilidad y
viabilidad de dos cepas probióticas microencapsuladas por lecho fluidizado. Inf
Tecnol. 2017;28(6):35-44. Disponible en: http://www.scielo.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0718-07642017000600005&lng=es&nrm=iso. (Consultado en línea: 28 de febrero de 2022).
21. Yáñez-Chamizo
B, Martínez-Pi Y, González-Cabeza Y, Figueroa-Pérez R, Pérez-Gutiérrez J,
Hechavarría-Milá JA, et al. Directrices sobre Buenas Prácticas de Fabricación
de Productos Farmacéuticos (Regulación No. 16-2012). En: Pérez-Cristiá RB y
Colectivo de Autores. Buenas Prácticas Farmacéuticas. Sistema Regulador en
Cuba. Segunda edición. La Habana: Centro para el Control Estatal de
Medicamentos, Equipos y Dispositivos Médicos (CECMED); 2017. p.12-80.
22. Yáñez-Chamizo B, Martínez-Pi Y, González-Cabeza
Y, Figueroa-Pérez R, Pérez-Gutiérrez J, Hechavarría-Milá JA, et al. Buenas
Prácticas de Laboratorio para el Control de Medicamentos (Regulación
No.37-2012). En: Pérez-Cristiá RB y Colectivo de Autores. Buenas Prácticas
Farmacéuticas. Sistema Regulador en Cuba. Segunda edición. La Habana: Centro
para el Control Estatal de Medicamentos, Equipos y Dispositivos Médicos
(CECMED); 2017. p.323-59.
Conflicto de Intereses
Los autores no declaran
conflictos de intereses.
Roles de autoría
Isabel Apezteguía-Rodríguez: metodología, análisis de los datos,
redacción del borrador original y la redacción del documento final.
José García-Suárez: metodología, análisis de los datos, revisión del
borrador original y del documento final.
Lourdes Margarita Zumalacárregui-de Cárdenas: metodología, análisis de
los datos, revisión del borrador original y del documento final.
Elias Nelson Rodríguez-García: análisis de los datos, revisión del
borrador original y del documento final.
Mónica Navarro-Mena: análisis de los datos, revisión del borrador
original y del documento final.
Natacha Pérez-Rodríguez: análisis de los datos, revisión del borrador
original y del documento final.
Odalys Ruiz-Hernández: revisión del documento final y supervisión del
desarrollo del trabajo.
Todos los autores revisaron y aprobaron la versión final del manuscrito.
*Lic. en Bioquímica, MSc. en Tecnología Farmacéutica
y Control de Medicamentos, Investigador Agregado, Tecnólogo de Avanzada de
Primer Nivel, Especialista Principal del Grupo de Documentación de Desarrollo
Tecnológico.