La inmunización con productos de excreción-secreción de Trichinella spiralis unido al bloqueo de CTLA-4 produce un elevado grado de protección ante un reto con el parásito

José Lino Zumaquero-Ríos, Martín Pérez-Santos, Abel Villa-Mancera, Jorge Sarracent-Pérez

Resumen


En la búsqueda de una vacuna experimental efectiva contra Trichinella spiralis se han utilizado diferentes estrategias, pero el grado de protección alcanzado en la casi totalidad de los ensayos es insuficiente para lograr un adecuado control de la enfermedad. En la literatura hay evidencias de que moléculas inhibidoras de la activación de los linfocitos T están implicadas en la regulación de la respuesta inmune contra los helmintos. El bloqueo de estas moléculas puede ser un blanco potencial para el tratamiento de las infecciones causadas por estos parásitos. Por otra parte, se ha informado que la inmunización con productos de excreción-secreción de larvas musculares de  T. spiralis proporciona una inmunidad protectora parcial. La infección con el parásito induce una elevada población de linfocitos T reguladores que modulan la respuesta inmune. En este trabajo encontramos que la inmunización con antígenos de excreción-secreción de larvas musculares, más el bloqueo de la molécula inhibidora CTLA-4 en los linfocitos T, causa una significativa reducción de las larvas del parásito en un modelo experimental murino. De esta forma, queda demostrado que la eliminación del efecto supresor inducido por el helminto da por resultado una respuesta Th2 protectora más potente

Palabras clave


Trichinella spiralis, CTLA-4, vacunas parasitarias

Texto completo:

PDF HTML

Referencias


Brusca RC, Moore W, Shuster SM. Invertebrates. Third Edition. Sunderland, MA: Sinauer Associates; 2016.

Gottstein B, Pozio E, Nockler K. Epidemiology, diagnosis, treatment and control of trichinellosis. Clin Microbiol Rev 2009;22(1):127-45.

Pozio E, Zarlenga DS. New pieces of the Trichinella puzzle. Int J Parasitol 2013;43(12-13):983-97.

Dea-Ayuela MA, Bolas-Fernández F. Dynamics of the IgG3 responses following immunisation of Balb/c mice with somatic and excretory-secretory antigens from various Trichinella species. Folia Parasitol 2000;47(3):172-80.

Ortega-Pierres G, Vaquero-Vera A, Fonseca-Liñan R, Bermúdez-Cruz RM, Arguello-García R. Induction of protection in murine experimental models against Trichinella spiralis: an up-to date review. J Helminthol 2015;89(5):526-39.

Bruschi F, Chiumiento L. Immunomodulation in trichinellosis: does Trichinella really escape the host immune system? Endocr Metab Immune Disord Drug Targets 2012;12(1):4-15.

Bai X, Wu X, Wang X, Liu X, Song Y, Gao I, et al. Inhibition of mammalian muscle differentiation by excretory secretory products of muscle larvae of Trichinella spiralis in vitro. Parasitol Res 2012;110(6):2481-90.

Robinson MW, Connolly B. Proteomics analysis of the excretory-secretory proteins of the Trichinella spiralis L1 larva, a nematode parasite of skeletal muscle. Proteomics 2005;5(17):4525-32.

Gamble HR. Trichinella spiralis: Immunization of mice using monoclonal antibody affinity isolated antigens. Exp Parasitol 1985;59(3):394-404.

Ortega-Pierres G, Muñiz E, Coral-Vázquez R, Parkhouse RM. Protection against Trichinella spiralis induced by purified stage- specific surface antigens of infective larvae. Parasitol Res 1989;75(7):563-7.

Dea-Ayuela MA, Rama-Iñiguez S, Bolas-Fernandez F. Vaccination of mice against intestinal Trichinella spiralis infections by oral administration of antigens microencapsulated in methacrilic acid copolymers. Vaccine 2006;24(15):2772-80.

Gruden-Movsesijan A, Ilic N, Mostarica-Stojkovics M, Stosic-Grujicic S, Milic M, Sofronic-Milosavljevic L. Mechanism of modulation of experimental autoimmune encephalomyelitis by chronic Trichinella spiralis infection in Dark Agouti rats. Parasite Immunol 2010;32(6):450-9.

Lepenies B, Jacobs T. The role of negative costimulators during parasitic infection. Endocr Metab Immune Disord Drug Targets 2008;8(4):279-88.

Furze RC, Culley FJ, Selkirk ME. Differential roles of the co-stimulatory molecules GITR and CTLA-4 in the immune response to Trichinella spiralis. Microbes Infect.2006;8(12-13):2803-10.

NOM-062-ZOO-1999. Especificaciones técnicas para la producción, cuidado y uso de los animales de laboratorio. Ciudad de México: Diario Oficial de la Federación; 2001.

De la Rosa-Arana JL, Campos-Rodríguez R, Rivera-Aguilar V, Escobar-Gutiérrez A, Miliar-García A, Herrera- González NE, et al. Comparative effects of levamisole, Staphylococcus, and Freund`s adjuvant on rat immunization with excretory and secretory antigens of Trichinella spiralis muscle larvae. Parasitol Res 2012;111:1599-605.

Wang ZQ, Cui J, Wei HY, Han HM, Zhang HW, Li YL: Vaccination of mice with DNA vaccine induces the immune response and partial protection against T. spiralis infection. Vaccine 2006;24(8):1205-12.

Hewitson JP, Maizels RM. Vaccination against helminth parasite infection. Expert Rev Vaccines 2014;13(4):473-87.

Bruschi F., Gómez-Morales MA. The translational immunology of trichinellosis: from rodents to humans. En: Jirillo E, Magrone T, Miragliotta G. Inmune response to parasitic infections: Immunity to helminths and novel therapeutic approaches. Sharjah, United Arab Emirates: Bentham Science Publishers; 2014. p.125-61.

Beiting DP, Gagliardo LF, Hesse M, Bliss SK, Meskill D, Appleton JA. Coordinated control of immunity to muscle stage Tichinella spiralis by IL 10 regulatory T cells and TGF β. J Immunol 2007;178(2):1039-47.


Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.


Copyright (c) 2017 José Lino Zumaquero-Ríos, Martín Pérez-Santos, Abel Villa-Mancera, Jorge Sarracent-Pérez

Licencia de Creative Commons
Este obra está bajo una licencia de Creative Commons Reconocimiento-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional.